Com o aumento dos preços da farinha de peixe e da soja na última década, proteínas de insetos tornaram-se um foco de pesquisa em novos ingredientes alternativos para rações para gado. Embora várias espécies de insetos tenham sido investigadas, a Black Soldier Fly (BSF; Hermetia illucens) continua sendo uma das opções mais confiáveis.
BSF, geralmente considerada uma espécie não-praga, é distribuído em quase todo o mundo desde a Segunda Guerra Mundial e não é conhecido por transportar quaisquer agentes patogênicos, ao contrário da mosca doméstica comum (Musca domestica).
As larvas podem crescer rapidamente e ter uma excelente taxa de alimentação. Eles podem consumir 25-500 mg de matéria fresca / larva / dia e se alimentar de uma ampla variedade de substratos, desde esterco até resíduos de alimentos. Um ciclo de crescimento leva 15 dias para um peso médio de larva de 0,25g sob condições ideais (30oC) e a carga de substrato / resíduo reduzida em até 70% (base na matéria seca). As larvas também podem remover bactérias patogênicas, reduzir odores residuais e inibir a oviposição incômoda de mosca doméstica; todos os resultados valiosos do saneamento secundário.
As larvas têm alto valor nutricional; dependente do substrato em que foram criados, com níveis de proteína bruta variando de 28 a 48 por cento, e níveis de lipídios de 12 a 42 por cento. Com exceção do ácido graxo ômega-3, o perfil lipídico é amplamente semelhante à farinha de peixe e existe potencial para aumentar o ácido graxo através do uso de alimentos apropriados, e. miudezas. O perfil de aminoácidos essenciais da refeição do inseto atende aos amplos requisitos das tilápias, simplificando os requisitos de formulação da dieta.
A tilápia é amplamente cultivada nas regiões tropicais e subtropicais do mundo e constitui o terceiro maior grupo de peixes finos de viveiro depois das carpas e dos salmonídeos. Até o momento, apenas quatro estudos foram publicados sobre a avaliação da refeição BSF no crescimento da tilápia e resultados de produção.
Alguns dos primeiros trabalhos de Bondari &Sheppard mostraram resultados decepcionantes. Em 1981, eles demonstraram que a taxa de crescimento da tilápia azul (Oreochromis aureus) em policultura com bagre, quando alimentados com dietas contendo 50-75% e 100% de larvas frescas da mosca-soldado ao longo de um período de 10 semanas foi comparável aos peixes controle alimentados com dietas comerciais. O desenho complexo do experimento tornou a interpretação dos resultados problemática, no entanto, uma vez que era impossível controlar os comportamentos alimentares diferentes e possivelmente competitivos das duas espécies. Um segundo julgamento em 1987, descobriram que uma monocultura de tilápia alimentada com larvas inteiras ou picadas ad libitum deprimia severamente o crescimento dos peixes em comparação com a dieta padrão.
O uso de larvas frescas (em vez de secas) pelos autores também levanta questões em torno da comercialização potencial. Primeiro, larvas frescas reduzem a ingestão de matéria seca e proteína em comparação com uma dieta "seca". Em segundo lugar, as pré-pupas foram usadas, visto que é o estágio larval mais fácil de coletar por causa de seu comportamento errante e de "auto-colheita" antes da pupação; nesta fase, eles são insensíveis à luz.
Contudo, eles têm um conteúdo de quitina altamente elevado; um açúcar quase indigerível e o principal constituinte da "pele" dos insetos. As larvas mais jovens de cor branca têm um teor insignificante de quitina e são correspondentemente mais digeríveis, mas a colheita eficiente de substratos de alimentação é muito mais desafiador devido ao comportamento de evitar a luz. Isso resulta em uma necessidade de separação mecânica das larvas mais jovens do substrato.
As comparações entre esses e outros estudos são complicadas por uma série de fatores de projeto experimental. Ogunji et al. (2008) usou um seco, farinha de larvas de baixa proteína (base de 28,6% MS) e relataram que o crescimento dos peixes foi significativamente menor do que os peixes alimentados com farinha de peixe para os tratamentos contendo 150 e 300g / kg de farinha de larvas. Contudo, o método de formulação dietética empregado não resultou em dietas não isonitrogênicas nem iso-calóricas, tornando-os difíceis, se não impossível, comparar.
Um estudo mais recente sobre tilápia do Nilo (Devic et al. 2017) usou farinha seca de larvas brancas para formular dietas isonitrogênicas e isoenergéticas com inclusões de farinha de larvas a 0, 30, 50 e 80 g / kg substituindo gradualmente três alimentos convencionais caros:farinha de peixe, óleo de peixe e farinha de soja. Os resultados não mostraram nenhuma diferença significativa nos parâmetros de crescimento (peso final; ganho de peso e SGR), eficiência de utilização da ração (FCR e PER e consumo de ração) entre os tratamentos. Da mesma forma, a composição corporal do peixe (matéria seca, proteína bruta, lípido, cinzas e fibras) não foi afetado pelos tratamentos, exceto as composições de ácidos graxos que refletiam as das dietas.
Assim, o estudo confirmou o potencial de substituição da farinha de larva branca BSF como um substituto potencial para outras fontes de proteína dietética comumente usadas com relação ao desempenho biológico (se não econômico).
Os mesmos autores (em 2014) passaram a estimar que a substituição de 30 por cento da farinha de peixe usada na gaiola para produção de 6.000 TM / pa de tilápia no BSF exigiria respectivamente 1,4 TM, 60,8 MT e 175,5 MT de farinha de larva seca para produzir as quantidades necessárias de cria, peixes juvenis e de alimentação, respectivamente.
Contudo, enquanto a tecnologia ainda está em desenvolvimento, aumentar a produção continua sendo um grande desafio. As principais restrições abordadas no momento, além da óbvia tecnologia de automação ainda por desenvolver, são o uso de um adequado, substrato consistente (qualidade e disponibilidade) de baixo custo e a colheita das larvas brancas do substrato.
No momento, o BSFML ainda não é comercializado, mas considerando seu valor potencial, seu uso deve ser direcionado para estágios de alto valor, tais como alevinos ou espécies de alto valor. Ensaios recentes em aves demonstraram sua eficiência:em um estudo publicado este ano por Wallace et al. o ganho de peso corporal aumentou significativamente em galinhas-d'angola alimentadas com dietas incrementais de substituição da mosca-preta, em comparação com o grupo de controle alimentado com uma dieta à base de farinha de peixe. Sua saúde melhorou significativamente com esta substituição, abrindo a porta para uma potencial alimentação imunomoduladora, ainda a ser demonstrado em peixes, ou outras espécies de gado.
Embora essa tecnologia ainda esteja em sua infância, existe um mercado potencial real em países de baixa renda, onde a remediação de resíduos orgânicos e a falta de fontes de proteínas confiáveis e baratas costumam ser problemas a serem superados. Nessa ótica, se um processo adequado de separação dos resíduos estiver ocorrendo, e se a tecnologia avançar, as larvas BSF podem ser agentes eficazes para convertê-los em uma fonte sustentável e local de proteína de alto valor, criando ao mesmo tempo empregos, e reduzir o risco ambiental representado pela eliminação de resíduos orgânicos.
Contudo, na Europa - ou mesmo no mundo ocidental - a situação é diferente. Além de uma mudança na legislação recentemente (Regulamento da UE 2017 / 893–1 de julho de 2017), a farinha de insetos só pode ser produzida em substratos vegetais e antigos alimentos não processados, restringindo os substratos potenciais a resíduos já valorizados pelo setor da alimentação animal. Além disso, no momento, proteína de inseto só pode ser usada para rações e aquicultura, mas não aves ou porquinhos. A extensão da autorização está atualmente em discussão, e pode se estender no próximo ano para outras rações para gado, e permitir uma gama mais ampla de substratos, potencialmente tornando-o econômico.
A produção de farinha de inseto, mesmo que não haja efeitos adicionais, como probióticos ou outros efeitos funcionais, só poderia ser sustentável e lógico se os insetos fossem produzidos em substratos de baixo valor que atualmente geram custos de descarte. Portanto, seu papel é melhor visto como um componente de uma economia circular por meio da reciclagem de resíduos. Enquanto isso, mais pesquisas são necessárias para desbloquear o potencial da refeição Black Soldier Fly, como ingrediente alimentar local e barato para a aquicultura.
Leitura adicional
Dispositivo., Leschen W., Murray F.J., Little D.C., 2017. Desempenho de crescimento, utilização de ração e composição corporal de tilápia do Nilo em amamentação avançada (Oreochromis niloticus) alimentada com dietas contendo farelo de larvas de Mosca do Soldado Negro (Hermetia illucens). Nutrição da aquicultura. DOI 10.1111 / anu.12573
Barroso F.G., De Haro C., Sanchez-Muros M.J., Venegas E., Martinez-Sanchez A., Perez-Banon C., 2014. O potencial de várias espécies de insetos para uso como alimento para peixes. Aquicultura. 422-423:193-201p.
Bondari, K. e Sheppard, D.C., 1987. Soldier fly Hermetia illucens L., como alimento para o peixe-gato do canal, Ictalurus punctatus (Rafinesque), e tilápia azul, Oreochromis aureus (Steindachner). Aqüicultura e Gestão Pesqueira. 18:209-220.
Maquart P.O., Murray F.J., Newton R.W., Leschen W.A., Pequeno D.C. Potencial para transformação em escala comercial baseada em insetos de resíduos orgânicos para rações aquáticas e produção de safras em Gana. Conferência de PhD. Universidade de Stirling, Escócia. 22 de fevereiro de 2015. Pôster
Quer saber mais sobre insetos como alimento?
Makkar H.P.S., Tran G., Heuzé V., Ankers P., 2014. Estado da arte sobre o uso de insetos na alimentação animal. Ciência e Tecnologia da Alimentação Animal. 197:1-33.
Wang Y-S. &Shelomi M., 2017. Revisão de Black Soldier Fly (Hermetia illucens) como ração animal e humana. Alimentos 6 (10):doi:10.3390 / foods6100091
Kenis M., Koné N., Crisóstomo C.A.A.M., Dispositivo., Koko G.K.D., Clottey V.A., Nacambo S., Mensah G.A., 2014. Insetos usados para alimentação animal na África Ocidental. Entomologia. 218 (2):107-114.
por Maquart P.O., Murray F., Leschen W., Netwon R., Little D.C., Instituto de Aquicultura, Universidade de Stirling, Stirling, Reino Unido
Autor correspondente:Pierre-Olivier Maquart [email protected]
