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Como fazer a cultura de tecidos de anubias?

Introdução

Você tem um aquário em casa ou está no negócio de aquários? Nós vamos, em ambos os casos, as plantas têm sido um ótimo elemento para decorar o aquário, torná-lo vivo, e dar aos peixes a sensação de seu habitat natural. Para dar a eles um ambiente aconchegante para brincar e passear. As plantas naturais do aquário fornecem abrigo aos seus peixes e um local para procriar e cuidar dos seus filhotes.

Avançar, a presença de plantas naturais em aquários facilita a absorção de CO2 e amônia (resíduos de peixes liberados) da água e liberam oxigênio, necessário para o crescimento e sobrevivência dos habitantes do seu aquário.

As plantas de aquário se tornaram populares com a crescente demanda de aquários por pessoas para suas casas ou fábricas. A necessidade comercial dessas plantas atraiu muitos culturistas em todo o mundo para tentar sua experiência em técnicas de curadoria para cultivar essas plantas em grande escala.

Algumas das plantas mais conhecidas são Anubias, moneywort, erva-chifre, lótus tigre, Hygrophila polysperma , lentilha d'água, e glicínias de água.

Este artigo cobre o método de cultivo in vitro de Anubis e o ambiente adequado que suporta seu crescimento.

Sobre Anubias

Anubias é uma mania para amadores e culturistas em todo o mundo. Eles são conhecidos por sua natureza resistente (podem ser mantidos em várias condições) e belas folhas verdes e são fáceis de introduzir no seu aquário. Eles mantêm a água do tanque limpa e oxigenada.

O gênero Anubias pertence à família das Arecaceae. Ele contém plantas com flores aquáticas e semi-aquáticas. As plantas são nativas da África central e ocidental tropical. Eles são encontrados principalmente no habitat de rios e riachos, mas também pode ser encontrado em pântanos.

Anubias tem ampla, Grosso, folhas escuras que vêm em muitas formas diferentes. Sua altura máxima é de cerca de 7,5 polegadas, mas pode variar dependendo das condições ambientais.

Imagem:A planta Anubia.

As plantas têm crescimento lento, portanto, requerem menos manutenção, exceto um pouco de corte de vez em quando. Para manter essas plantas, você precisa seguir a medida explicada a seguir:

Cultura de tecidos de Anubias barteri var. Nana

Anubias barteri é a planta mais comumente cultivada em aquários. Possui diversas variedades, incluindo Anubias Barteri var. Barteri, A. barteri var. Angustifolia, A. barteri var. Caladiifolia, A.barteri var. glabra, e A. barteri var. Nana. Entre todos esses A. barteri var. Nana é mais preferida para aquários.

Anubias não requer manutenção meticulosa das plantas. Você só precisa cortar as folhas próximas ao rizoma com uma tesoura afiada. Eles preferem o pH da água na faixa de 6,5 a 7,5, mas também pode se adaptar a um valor de pH de 5,5 a 9,0 devido à sua natureza de extrema tolerância ao pH. A temperatura perfeita para manter essas plantas é entre 22 a 27 ° C (72-82 ° F).

A técnica convencional para cultivar Anubias é usando divisão de stolon. Mas, tem uma taxa de multiplicação muito lenta, portanto, uma técnica ineficiente para a propagação comercial de plantas. A micropropagação de Anubias é uma técnica alternativa incrível para cultivar plantas em grande escala com um rendimento melhor e mais alto.

Aqui, um protocolo para cultura A. barteri var. Nana usando cultura de ponta de broto é mencionada, retirado do estudo de Kanchanapoom, K., Chunui, P., &Kanchanapoom, K. (2012). Micropropagação de Anubias Barteri var. Nana, de Shoot Tip Culture and the Analysis of Ploidy Stability. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 40 (2), 148. doi:10.15835 / nbha4027520.

Procedimento

  1. Colete as mudas jovens de A. barteri var. Nana.
  2. Esterilize a superfície usando solução de cloreto de mercúrio a 0,5% (p / v) contendo 2 gotas de emulsionante Tween-20 por 100 ml de solução por 3 min.
  3. Lave as plantas tratadas três vezes com água destilada estéril para remover qualquer resíduo de desinfetante.
  4. Então, a superfície esteriliza os explantes usando uma diluição de Clorox ™ comercial de 10% (v / v) que rende NaOCl 5,25% e 2 gotas de Tween 20 por 100 mL de solução por 15 min, seguido por 5% (v / v) Clorox ™ durante 5 min.
  5. Enxágüe os explantes três vezes usando água destilada estéril.
  6. Extraia os explantes de 3,5 mm da ponta do rebento antes de cultivá-los em um meio basal contendo 3% de sacarose para o seu crescimento.
  7. Depois de seis semanas, transferir pequenos brotos com um par de folhas para meio MS suplementado com 3 mg / L BA e contendo 3% de sacarose e 0,82% de ágar.
  8. Ajuste o pH da mídia para 5,8 antes de esterilizar a 121 ℃ por 20 minutos.
  9. Manter as culturas a 25 ± 1˚C em uma sala de cultura com fotoperíodo de luz de 16 h.
  10. Subcultivar os explantes no intervalo de oito semanas.
  11. Manter as culturas a 25 ± 1˚C em uma cultura
  12. sala com fotoperíodo claro / escuro de 16/8 h sob iluminação de intensidade de fluxo de fótons fotossintéticos de 20 µmolm-2 s-1 fornecida por luz fluorescente branca fria.
  13. O enraizamento pode ser regenerado pela transferência dos brotos para a mídia MS desprovida de quaisquer reguladores de crescimento da planta ou cinetina isoladamente.

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